
实验一、动、植物组织总RNA的提取
一、材料、试剂和仪器
材料:动物组织,一次性塑料手套,200μl、1000μl吸头。
试剂:TRIzol总RNA提取试剂,氯仿,异丙醇,0.1%DEPC,75%乙醇(用RNase-free
水配制),RNase-free水。
仪器:烘箱,超低温冰箱,高速冷冻离心机,普通离心机,高压灭菌锅,微量取样器,
研钵
二、提取操作步骤
1、匀浆处理:
a、动物组织:以鼠肝脏RNA提取为例。取新鲜或-70C冻存组织,大约10-30mg组织
加1m1TRIquick,用一次性组织研磨杵或匀浆器匀浆处理。
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b、单层培养细胞:直接在培养板中加入TRIquick裂解细胞,每10cm面积加1ml
TRIquick。用取样器吹打混匀。
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c、细胞悬液:离心收集细胞。每5-10×10动物、植物和酵母细胞或每10细菌细胞加
1mlTRIquick。
d、血液处理:直接取新鲜的血液,加入3倍体积红细胞裂解液,混匀后室温放置10
分钟,8,000-10,000rpm离心1分钟。彻底吸弃上清,收集白细胞沉淀。每100-200μl
血液收集的白细胞沉淀加入1mlTRIquick。
2、将匀浆样品在室温放置5分钟,使得核酸蛋白复合物完全分离。如不连续进行实验,
加入TRIquick的匀浆样品可在-70C下保存1-2个月。
3、可选步骤:4℃12,000rpm离心5-10分钟,取上清。如果样品中含有较多蛋白、
脂肪、多糖或肌肉、植物结节部分等,可离心去除。离心得到的沉淀中包括细胞外膜、多糖、
高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织样品时,上层是大量油脂,应除去。取澄
清的匀浆溶液进行下一步操作。
4、每使用1mlTRIquick向匀浆样品中加0.2ml氯仿,盖好管盖,剧烈振荡15秒,室
温放置3-5分钟,使其自然分相。如不能旋涡混匀,可手动颠倒混匀2分钟代替。
5、4℃12,000rpm离心10-15分钟。样品会分成三层:黄色的有机相,中间层和无色
的水相,RNA主要在水相中,把水相(通常为550μl)转移到新管中。
6、在上清中加入等体积冰冷的异丙醇,混匀,室温放置10-20分钟。
7、4℃12,000rpm离心10分钟。去上清。离心前RNA沉淀经常是看不见的,离心
后在管侧和管底形成胶状沉淀。
8、加入1ml75%乙醇(用RNase-free的水配置)洗涤沉淀。每使用1mlTRIquick,至
少加1m175%乙醇。
9、4℃7,000rpm离心5分钟,弃上清;短暂快速离心,用移液器小心吸弃上清,注
意不要吸取到沉淀。转速不要超过7,000rpm,否则盐离子会沉淀下来,导致RNA不易溶
解。
10、室温放置晾干(不要晾的过干,RNA完全干燥后会很难溶解,大约晾干1-2分钟
左右即可),加入适量RNase-free水(根据实验需要加入30-100μl水),充分溶解RNA。
11、RNA样品-70℃下保存。
预防RHase污染,应注意以下几方面:
1、经常更换新手套。因为皮肤经常带有细菌,可能导致RNase污染。
2、使用无RNase的塑料制品和枪头避免交叉污染。
3、RNA在TRIquick试剂中时不会被RNase污染。但提取后继续处理过程中应使用不
含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4小时,塑料器皿可在0.5MNaOH
中浸泡10分钟,然后用水彻底清洗,再灭菌,即可去除RNase。
4、配制溶液应使用RNase-free的水。(将水加入到干净的玻璃瓶中,加入DEPC至终
浓度0.1%(v/v),放置过夜,高压灭菌)。
不同组织或细胞RNA提取预期得率
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